SCIENTIFIC HUB

Araştırmanın izini sürün.

SCIENTIFIC LITERATURE · MED

Parkinson nörotoksisitesinin HEK293 ve SH-SY5Y hücresel modellerinde CRISPRa'nın Dopa dekarboksilaz ve GTP siklohidrolaz 1'i hedef alan transkripsiyonel ve hücresel etkilerinin değerlendirilmesi.

Assessment of the transcriptional and cellular effects of CRISPRa targeting Dopa decarboxylase and GTP cyclohydrolase 1 in HEK293 and SH-SY5Y cellular models of Parkinsonian neurotoxicity.

Makine çevirisi · Editoryal inceleme bekliyor

Front Cell Neurosci · 2026-10-08

DOI: 10.3389/fncel.2026.1883789PMID: 42923163

Open accessresearch-article; Journal ArticleKaynağa git ↗

Araştırma özeti

Kaynak özetin Türkçe makine çevirisi. Klinik kullanım öncesinde özgün yayınla karşılaştırılmalı; hekim incelemesi değildir. cc by

Parkinson hastalığı (PD), ikinci en yaygın nörodejeneratif bozukluktur ve substantia nigra pars compasta (SNc) 'de dopamin eksikliği ve motor disfonksiyona yol açan dopaminerjik nöronların aşamalı kaybı ile karakterizedir. Düzenli olarak kümelenen aralıklı palindromik tekrarlar (CRISPR) tabanlı teknolojiler, hedeflenen gen modülasyonu için potansiyel bir yaklaşım sağlar, ancak PD'nin hücresel modellerindeki etkinliği ve güvenliği henüz kurulmamıştır. Bu çalışma, insan embriyonik böbrek (HEK293) hücrelerinde Dopa dekarboksilaz (DDC) ve GTP siklohidrolaz 1 (GCH1) ve insan nöroblastomunu (SH-SY5Y) kullanan 6-hidroksidopamin (6-OHDA) kaynaklı nörotoksisite modelini hedef alan CRISPR aktivasyonunun (CRISPRA) fizibilite ve transk etkilerini araştırdı. Parkinson benzeri toksisite, CRISPRa transfeksiyonundan önce 6-OHDA ile SH-SY5Y hücrelerinde indüklendi. DDC ve GCH1'i hedeflemek için vektörsüz bir CRISPRa sistemi kullanıldı, tek kılavuzlu RNA'lar (sgRNA'lar) dCas9-VP64 ve MS2-p65-HSF1 (MPH) ile birleştirildi ve ribonükleoprotein (RNP) kompleksleri oluşturdu ve Lipofectamin 3000 kullanılarak teslim edildi. DDC'nin CRISPRa hedeflemesi, 24 saat (p = 0.0496) ve 48 saat (p = 0.0064) tedavi edilmemiş kontrollere göre SH-SY5Y hücrelerinde artmış DDC ekspresyonu ile ilişkiliydi. Bununla birlikte, ifade seviyeleri 6-OHDA ile tedavi edilen PD kontrol grubunda gözlemlenenlerden önemli ölçüde farklı değildi. Buna karşılık, GCH1 ifadesi CRISPRa'dan sonra önemli ölçüde değiştirilmedi. CRISPRa ayrıca HEK293 hücrelerinde hücre canlılığı üzerinde önemli bir etkiye sahip değildi. SH-SY5Y hücrelerinde, 6-OHDA tedavi edilmemiş kontrollere kıyasla hücre canlılığını önemli ölçüde azaltmıştır (p = 0.0129). DDC hedefli hücrelerde 24 saat (p = 0.0026) ve 48 saat (p = 0.0017) ve GCH1 hedefli hücrelerde 24 saat (p = 0.0017) ve 48 saat (p = 0.0008) benzer azalmalar gözlenmiştir; Bununla birlikte, CRISPRa ile tedavi edilen gruplardan hiçbiri 6-OHDA ile tedavi edilen PD kontrolünden önemli ölçüde farklı değildi. Bu bulgular, CRISPRa'nın GCH1'in tespit edilebilir modülasyonu olmadan DDC'nin yükseltilmesi ile karakterize edilen mütevazı bir transkripsiyon yanıtı ortaya koyduğunu ve 6-OHDA kaynaklı sitotoksisiteyi şiddetlendirmediğini göstermektedir. Daha fazla optimizasyon, protein seviyesi, enzimatik aktivite ve dopamin ölçümleri ile birlikte, bu transkripsiyonel değişikliklerin dopamin biyosentezi üzerindeki fonksiyonel etkilere dönüşüp dönüşmediğini belirlemek için gereklidir.

Özgün kaynak özetini okuyun

Parkinson's disease (PD) is the second most common neurodegenerative disorder and is characterized by the progressive loss of dopaminergic neurons in the substantia nigra pars compacta (SNc), leading to dopamine deficiency and motor dysfunction. Clustered regularly interspaced palindromic repeats (CRISPR)-based technologies provide a potential approach for targeted gene modulation, although their effectiveness and safety in cellular models of PD remain to be established. This study investigated the feasibility and transcriptional effects of CRISPR activation (CRISPRa) targeting Dopa decarboxylase (DDC) and GTP cyclohydrolase 1 (GCH1) in human embryonic kidney (HEK293) cells and a 6-hydroxydopamine (6-OHDA)-induced neurotoxicity model using human neuroblastoma (SH-SY5Y) cells. Parkinsonian-like toxicity was induced in SH-SY5Y cells with 6-OHDA prior to CRISPRa transfection. A vector-free CRISPRa system was used to target DDC and GCH1, with single-guide RNAs (sgRNAs) assembled with dCas9-VP64 and MS2-p65-HSF1 (MPH) to form ribonucleoprotein (RNP) complexes and delivered using Lipofectamine 3000. CRISPRa targeting of DDC was associated with increased DDC expression in SH-SY5Y cells relative to untreated controls at 24 h (p = 0.0496) and 48 h (p = 0.0064). However, expression levels did not differ significantly from those observed in the 6-OHDA-treated PD control group. In contrast, GCH1 expression was not significantly altered following CRISPRa. CRISPRa also had no significant effect on cell viability in HEK293 cells. In SH-SY5Y cells, 6-OHDA significantly reduced cell viability compared with untreated controls (p = 0.0129). Similar reductions were observed in DDC-targeted cells at 24 h (p = 0.0026) and 48 h (p = 0.0017), and in GCH1-targeted cells at 24 h (p = 0.0017) and 48 h (p = 0.0008); however, none of the CRISPRa-treated groups differed significantly from the 6-OHDA-treated PD control. These findings indicate that CRISPRa elicited a modest transcriptional response, characterized by upregulation of DDC without detectable modulation of GCH1, and did not exacerbate 6-OHDA-induced cytotoxicity. Further optimisation, together with protein-level, enzymatic activity, and dopamine measurements, is required to determine whether these transcriptional changes translate into functional effects on dopamine biosynthesis.

Bilimsel değerlendirme

01

Araştırma sorusu

Sorunun kapsamı orijinal çalışma üzerinden değerlendirilir.

02

Yöntem ve örneklem

Çalışma tasarımı ve örneklem için kaynak makaleyi kontrol edin.

03

Temel bulgular

Bu kayıt için editoryal olarak onaylanmış bulgu özeti henüz yayımlanmadı.

04

Sınırlılıklar

Sonuçların genellenebilirliği, yanlılık ve klinik anlamı ayrıca incelenmelidir.

Bibliyografik veriden yöntem, örneklem veya klinik sonuç çıkarımı yapılmaz.